Современные исследования легочных органоидов млекопитающих
1. Kim J, Koo BK, Knoblich JA. Органоиды человека: модельные системы для биологии и медицины человека. Nat Rev Mol Cell Biol. 2020; 21: 571–584. doi: 10.1038/s41580-020-0259-3. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
2. Уитсетт Дж.А., Калин Т.В., Сюй Ю., Калиниченко В.В. Строительство и регенерация легких клетка за клеткой. Physiol Rev. 2019; 99: 513–554. doi: 10.1152/physrev.00001.2018. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
3. Краситель Б.Р., Миллер А.Дж., Спенс Дж.Р. Как вырастить легкое: применение принципов биологии развития для создания линий легких из плюрипотентных стволовых клеток человека. Curr Pathobiol Rep. 2016; 4:47–57. doi: 10.1007/s40139-016-0102-x. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
4. Депрез М., Сарагоши Л.Е., Тручи М., Бекавин С., Руис Гарсия С., Аргуэль М.Дж., Плезант М., Магноне В., Лебриган К., Абеланет С.
, Брау Ф., Паке А., Пеер Д., Маркетт Ч., Лерой С., Барбри П. Одноклеточный атлас здоровых дыхательных путей человека. Am J Respir Crit Care Med. 2020;202:1636–1645. doi: 10.1164/rccm.201911-2199OC. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
5. Plopper CG, Mariassy AT, Lollini LO. Структура, выявленная при вскрытии дыхательных путей. Сравнение легких млекопитающих. Ам преподобный Респир Дис. 1983; 128:S4–7. doi: 10.1164/arrd.1983.128.2P2.S4. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
6. Warburton D, Schwarz M, Tefft D, Flores-Delgado G, Anderson KD, Cardoso WV. Молекулярные основы морфогенеза легких. Мех Дев. 2000;92:55–81. doi: 10.1016/s0925-4773(99)00325-1. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
7. Шеннон Дж.М., Хаятт Б.А. Эпителиально-мезенхимальные взаимодействия в развивающемся легком. Энн Рев Физиол. 2004; 66: 625–645. doi: 10.1146/annurev.physiol.66.032102.135749. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
8. Warburton D, Bellusci S, De Langhe S, Del Moral PM, Fleury V, Mailleux A, Tefft D, Unbekandt M, Wang K, Shi W.
Молекулярные механизмы раннего спецификация легких и морфогенез ветвления. Педиатр Рез. 2005; 57:26р–37р. doi: 10.1203/01.PDR.0000159570.01327.ED. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
9. Que J, Choi M, Ziel JW, Klingensmith J, Hogan BL. Морфогенез трахеи и пищевода: текущие игроки и новые роли для головы и Bmps. Дифференциация. 2006; 74: 422–437. doi: 10.1111/j.1432-0436.2006.00096.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
10. Cardoso WV, Lu J. Регуляция раннего морфогенеза легких: вопросы, факты и противоречия. Разработка. 2006; 133:1611–1624. doi: 10.1242/dev.02310. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
11. Maeda Y, Dave V, Whitsett JA. Транскрипционный контроль морфогенеза легких. Physiol Rev. 2007; 87:219–244. doi: 10.1152/physrev.00028.2006. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
12. Plopper CG, Hyde DM. Эпителиальные клетки бронхиол. В: Родитель Р.А., редактор. Сравнительная биология нормального легкого. Амстердам: Эльзевир; 2015. С. 83–92. [Google Scholar]
13.
Рейнольдс С.Д., Пинкертон К.Е., Мариасси А.Т. Эпителиальные клетки трахеи и бронхов. В: Родитель Р.А., редактор. Сравнительная биология нормального легкого. Амстердам: Эльзевир; 2015. С. 61–81. [Google Scholar]
14. Рок Дж. Р., Рэнделл С. Х., Хоган Б. Л. М. Базальные стволовые клетки дыхательных путей: взгляд на их роль в эпителиальном гомеостазе и ремоделировании. Dis Model Mech. 2010;3:545–556. doi: 10.1242/dmm.006031. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
15. Моррисей Э.Э., Хоган Б.Л. Подготовка к первому вдоху: генетические и клеточные механизмы развития легких. Ячейка Дев. 2010;18:8–23. doi: 10.1016/j.devcel.2009.12.010. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
16. Flecknoe SJ, Wallace MJ, Cock ML, Harding R, Hooper SB. Изменения пропорций альвеолярных эпителиальных клеток во время внутриутробного и постнатального развития у овец. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2003; 285: L664–670. doi: 10.1152/ajplung.00306.
2002. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
17. Fan Z, Perisse IV, Cotton CU, Regouski M, Meng Q, Domb C, Van Wettere AJ, Wang Z, Harris A, White KL, Polejaeva IA. Модель муковисцидоза у овец, вызванная нарушением CRISPR/Cas9 гена CFTR. Взгляд JCI. 2018;3:e123529. doi: 10.1172/jci.insight.123529. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
18. Вулдридж А.Л., Клифтон В.Л., Мосс Т.Дж.М., Лу Х., Джамали М., Агостино С., Мюльхауслер Б.С., Моррисон Дж.Л., Де Маттео Р., Уоллес М.Дж., Бишоф Р.Дж., Гэтфорд К.Л. Аллергическая астма у матери во время беременности изменяет развитие легких и иммунитета плода у овец: потенциальные механизмы программирования астмы и аллергии. Дж. Физиол. 2019;597:4251–4262. doi: 10.1113/JP277952. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
19. Gray ME, Sullivan P, Marland JRK, Greenhalgh SN, Meehan J, Gregson R, Clutton RE, Cousens C, Griffiths DJ, Murray A, Argyle D. Перевод романа Модель аденокарциномы легкого овцы для рака легкого человека.
Фронт Онкол. 2019;9:534. doi: 10.3389/fonc.2019.00534. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
20. Sitthicaroenchai P, Alnajjar S, Ackermann MR. Модель заражения респираторно-синцитиальным вирусом (RSV) младенцев у новорожденных ягнят. Сотовые Ткани Res. 2020; 380: 313–324. doi: 10.1007/s00441-020-03213-w. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
21. Varela M., Golder M., Archer F., de las Heras M., Leroux C., Palmarini M. Модель на крупных животных для оценки эффектов ингибиторов Hsp90 при лечении аденокарциномы легких. Вирусология. 2008; 371: 206–215. doi: 10.1016/j.virol.2007.09.041. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
22. Kotton DN, Morrisey EE. Регенерация легких: механизмы, применение и возникающие популяции стволовых клеток. Нат Мед. 2014;20:822–832. doi: 10.1038/nm.3642. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
23. Роулинз Э.Л., Хоган Б.Л. Эпителиальные стволовые клетки легких: привилегия немногих или возможности для многих? Разработка.
2006; 133: 2455–2465. doi: 10.1242/dev.02407. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
24. Rackley CR, Stripp BR. Строительство и поддержание эпителия легкого. Джей Клин Инвест. 2012;122:2724–2730. doi: 10.1172/JCI60519. [Статья PMC бесплатно] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
25. Schilders KA, Eenjes E, van Riet S, Poot AA, Stamatialis D, Truckenmuller R, Hiemstra PS, Rottier RJ. Регенерация легких: стволовые клетки легких и разработка устройств, имитирующих легкие. Дыхание Рез. 2016;17:44. дои: 10.1186/с12931-016-0358-з. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
26. Арчер Ф., Аби-Ризк А., Деслуар С., Долмазон С., Гинис Б., Гиген Ф., Коттин В., Морнекс Дж. Ф., Леру С. Прародители легких от ягнят могут дифференцироваться в специализированные альвеолярные или бронхиолярные эпителиальные клетки. BMC Vet Res. 2013;9:224. дои: 10.1186/1746-6148-9-224. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
27. Hong KU, Reynolds SD, Watkins S, Fuchs E, Stripp BR.
Потенциал дифференцировки базальных клеток трахеи in vivo: свидетельство существования мультипотентных и унипотентных субпопуляций. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2004; 286: L643–649. doi: 10.1152/ajplung.00155.2003. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
28. Rock JR, Onaitis MW, Rawlins EL, Lu Y, Clark CP, Xue Y, Randell SH, Hogan BL. Базальные клетки как стволовые клетки трахеи мыши и эпителия дыхательных путей человека. Proc Natl Acad Sci U S A. 2009;106:12771–12775. doi: 10.1073/pnas.0906850106. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
29. Rock JR, Gao X, Xue Y, Randell SH, Kong YY, Hogan BL. Notch-зависимая дифференцировка базальных стволовых клеток взрослых дыхательных путей. Клеточная стволовая клетка. 2011;8:639–648. doi: 10.1016/j.stem.2011.04.003. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
30. Роулинз Э.Л., Окубо Т., Сюэ Ю., Брасс Д.М., Аутен Р.Л., Хасегава Х., Ван Ф., Хоган Б.Л. Роль клеток Scgb1a1+ Clara в долгосрочном поддержании и восстановлении эпителия дыхательных путей легких, но не альвеолярного.
Клеточная стволовая клетка. 2009; 4: 525–534. doi: 10.1016/j.stem.2009.04.002. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
31. Chen H, Matsumoto K, Brockway BL, Rackley CR, Liang J, Lee JH, Jiang D, Noble PW, Randell SH, Kim CF, Stripp БР. Эпителиальные предшественники дыхательных путей специфичны для региона и проявляют дифференциальные ответы на индуцированное блеомицином повреждение легких. Стволовые клетки. 2012;30:1948–1960. doi: 10.1002/основа 1150. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
32. Kim CF, Jackson EL, Woolfenden AE, Lawrence S, Babar I, Vogel S, Crowley D, Bronson RT, Jacks T. Идентификация бронхиоальвеолярного ствола клеток в нормальном легком и при раке легкого. Клетка. 2005; 121:823–835. doi: 10.1016/j.cell.2005.03.032. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
33. Barkauskas CE, Cronce MJ, Rackley CR, Bowie EJ, Keene DR, Stripp BR, Randell SH, Noble PW, Hogan BL. Альвеолярные клетки 2 типа представляют собой стволовые клетки легких взрослых.
Джей Клин Инвест. 2013;123:3025–3036. doi: 10.1172/jci68782. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
34. Десаи Т.Дж., Браунфилд Д.Г., Краснов М.А. Альвеолярные клетки-предшественники и стволовые клетки в развитии, обновлении и раке легких. Природа. 2014; 507:190–194. doi: 10.1038/nature12930. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
35. Zacharias WJ, Frank DB, Zepp JA, Morley MP, Alkhaleel FA, Kong J, Zhou S, Cantu E, Morrisey EE. Регенерация альвеол легкого эволюционно консервативным эпителиальным предшественником. Природа. 2018; 555: 251–255. doi: 10.1038/nature25786. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
36. Джайн Р., Баркаускас К.Э., Такеда Н., Боуи Э.Дж., Агаджанян Х., Ван К., Падманабхан А., Мандерфилд Л.Дж., Гупта М., Ли Д., Ли Л., Триведи К.М., Хоган Б.Л.М., Эпштейн Дж.А. Пластичность альвеолярных клеток Hopx(+) типа I для регенерации клеток типа II в легких. Нац коммун. 2015;6:6727. doi: 10.
1038/ncomms7727. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
37. Vaughan AE, Brumwell AN, Xi Y, Gotts JE, Brownfield DG, Treutlein B, Tan K, Tan V, Liu FC, Looney MR, Matthay Массачусетс, Рок-младший, Чепмен Х.А. Линейно-отрицательные предшественники мобилизуются для регенерации легочного эпителия после крупного повреждения. Природа. 2015; 517: 621–625. doi: 10.1038/nature14112. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
38. Травальини К.Дж., Набхан А.Н., Пенланд Л., Синха Р., Гиллих А., Сит Р.В., Чанг С., Конли С.Д., Мори Ю., Сейта Дж., Берри Г.Дж., Шрагер Д.Б., Мецгер Р.Дж., Куо К.С., Нефф Н., Вайсман Ил, Квейк С.Р., Краснов М.А. Атлас молекулярных клеток легкого человека на основе секвенирования одноклеточной РНК. Природа. 2020; 587: 619–625. doi: 10.1038/s41586-020-2922-4. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
39. Jiang D, Schaefer N, Chu HW. Культура интерфейса воздух-жидкость эпителиальных клеток дыхательных путей человека и мыши.
Методы Мол Биол. 2018;1809: 91–109. doi: 10.1007/978-1-4939-8570-8_8. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
40. Xie X, Gan Y, Pang M, Shao G, Zhang L, Liu B, Xu Q, Wang H, Feng Y, Yu Y, Chen R, Wu M, Zhang Z, Hua L, Xiong Q, Liu M, Feng Z. Создание и характеристика увековеченной теломеразой линии бронхиальных эпителиальных клеток свиньи. J Cell Physiol. 2018; 233:9763–9776. doi: 10.1002/jcp.26942. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
41. Cozens D, Grahame E, Sutherland E, Taylor G, Berry CC, Davies RL. Разработка и оптимизация модели дифференцированных эпителиальных клеток дыхательных путей крупного рогатого скота. Научный представитель 2018; 8:853. дои: 10.1038/s41598-017-19079-й. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
42. Cozens D, Sutherland E, Marchesi F, Taylor G, Berry CC, Davies RL. Временная дифференциация эпителиальных клеток бычьих дыхательных путей, выращенных на границе раздела воздух-жидкость. Научный доклад 2018; 8: 14893. doi: 10.
1038/s41598-018-33180-w. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
43. Lee DF, Salguero FJ, Grainger D, Francis RJ, MacLellan-Gibson K, Chambers MA. Выделение и характеристика альвеолярных пневмоцитов II типа из легких взрослых коров. Научный представитель 2018; 8: 11927. doi: 10.1038/s41598-018-30234-x. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
44. Ли Д., Чемберс М. Модель совместного культивирования бычьих альвеол. F1000рез. 2019;8:357. doi: 10.12688/f1000research.18696.2. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
45. Abs V, Bonicelli J, Kacza J, Zizzadoro C, Abraham G. Бронхиальные фибробласты лошадей усиливают пролиферацию и дифференцировку первичных клеток эпителия бронхов лошадей, совместно культивируемых под границей раздела воздух-жидкость. ПЛОС Один. 2019;14:e0225025. doi: 10.1371/journal.pone.0225025. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
46. Archer F, Jacquier E, Lyon M, Chastang J, Cottin V, Mornex JF, Leroux C.
Клетки альвеолярного типа II, выделенные из аденокарциномы легких: a модель экспрессии JSRV in vitro. Am J Respir Cell Mol Biol. 2007; 36: 534–540. doi: 10.1165/rcmb.2006-0285OC. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
47. Циммерманн Б. Культура органоидов легких. Дифференциация. 1987; 36: 86–109. дои: 10.1111/j.1432-0436.1987.tb00183.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
48. Chung MI, Bujnis M, Barkauskas CE, Kobayashi Y, Hogan BLM. Опосредованная нишами передача сигналов BMP/SMAD регулирует пролиферацию и дифференцировку альвеолярных стволовых клеток легких. Разработка. 2018;145:dev163014. doi: 10.1242/dev.163014. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
49. Tadokoro T, Gao X, Hong CC, Hotten D, Hogan BL. Передача сигналов BMP и клеточная динамика во время регенерации эпителия дыхательных путей из базальных предшественников. Разработка. 2016; 143:764–773. doi: 10.1242/dev.126656. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
50.
Longmire TA, Ikonomou L, Hawkins F, Christodoulou C, Cao Y, Jean JC, Kwok LW, Mou H, Rajagopal J, Shen SS, Dowton AA, Serra M, Weiss DJ, Green MD, Snoeck HW, Ramirez М.И., Коттон Д.Н. Эффективное получение очищенных предшественников легких и щитовидной железы из эмбриональных стволовых клеток. Клеточная стволовая клетка. 2012;10:398–411. doi: 10.1016/j.stem.2012.01.019. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
51. Wang D, Haviland DL, Burns AR, Zsigmond E, Wetsel RA. Чистая популяция клеток легочного альвеолярного эпителия II типа, полученная из эмбриональных стволовых клеток человека. Proc Natl Acad Sci USA. 2007;104:4449–4454. doi: 10.1073/pnas.0700052104. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
52. Huang SX, Islamic MN, O’Neill J, Hu Z, Yang YG, Chen YW, Mumau M, Green MD, Vunjak-Novakovic G, Бхаттачарья Дж., Снок Х.В. Эффективное создание эпителиальных клеток легких и дыхательных путей из плюрипотентных стволовых клеток человека.
Нац биотехнолог. 2014; 32:84–91. doi: 10.1038/nbt.2754. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
53. Ghaedi M, Calle EA, Mendez JJ, Gard AL, Balestrini J, Booth A, Bove PF, Gui L, White ES, Niklason LE. Альвеолярный эпителий, полученный из иПС-клеток человека, повторно заселяет внеклеточный матрикс легких. Джей Клин Инвест. 2013;123:4950–4962. doi: 10.1172/JCI68793. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
54. Джейкоб А., Морли М., Хокинс Ф., Макколи К.Б., Джин Дж. К., Хайнс Х., На К.Л., Уивер Т.Е., Ведай М., Херли К., Хайндс А., Руссо С.Дж., Кук С., Захариас В., Окс М., Трабер К., Куинтон Л.Дж., Крейн А., Дэвис Б.Р., Уайт Ф.В., Вамбах Дж., Уитсетт Дж.А., Коул Ф.С., Морриси Э.Е., Гуттентаг С.Х., Бирс М.Ф., Коттон Д.Н. Дифференцировка плюрипотентных стволовых клеток человека в функциональные клетки альвеолярного эпителия легких. Клеточная стволовая клетка. 2017;21:472–488.e10. doi: 10.1016/j.stem.2017.08.014. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
55.
Ямамото Ю., Гото С., Короги Ю., Секи М., Кониши С., Икео С., Соне Н., Нагасаки Т., Мацумото Х., Муро С., Ито И., Хираи Т., Коно Т., Судзуки Ю., Мисима М. Лонг -срочная экспансия альвеолярных стволовых клеток, полученных из иПС-клеток человека, в органоиды. Нат Методы. 2017;14:1097–1106. doi: 10.1038/nmeth.4448. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
56. Barkauskas CE, Chung MI, Fioret B, Gao X, Katsura H, Hogan BL. Органоиды легких: текущее использование и перспективы на будущее. Разработка. 2017; 144:986–997. doi: 10.1242/dev.140103. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
57. Чен Ю.В., Хуанг С.С., де Карвалью А.Л.Р., Хо С.Х., Ислам М.Н., Вольпи С., Нотаранжело Л.Д., Чианканелли М., Казанова Дж.Л., Бхаттачарья Дж., Лян А.Ф., Палермо Л.М., Поротто М., Москона А., Снок Х.В. Трехмерная модель развития и заболевания легких человека из плюрипотентных стволовых клеток. Nat Cell Biol. 2017; 19: 542–549. doi: 10.1038/ncb3510n. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
58.
Li Y, Wu Q, Sun X, Shen J, Chen H. Органоиды как мощная модель респираторных заболеваний. Стволовые клетки 2020;2020:5847876. doi: 10.1155/2020/5847876. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
59. Миллер А.Дж., Дай Б.Р., Феррер-Торрес Д., Хилл Д.Р., Оверим А.В., Ши Л.Д., Спенс М.Р. Создание органоидов легких из плюрипотентных стволовых клеток человека in vitro. Нат Проток. 2019;14:518–540. doi: 10.1038/s41596-018-0104-8. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
60. Choi J, Iich E, Lee J-H. Органогенез взрослого легкого в чашке: дифференцировка, заболевание и терапия. Дев биол. 2016; 420: 278–286. doi: 10.1016/j.ydbio.2016.10.002. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
61. Салахудин А.А., Чой С.С., Рустаги А., Чжу Дж., Ван Унен В., де ла О С, Флинн Р.А., Маргалеф-Катала М., Сантос А.Дж. М., Ю Дж., Батиш А., Усуи Т., Чжэн GXY, Эдвардс К.Э., Wagar LE, Luca V, Anchang B, Nagendran M, Nguyen K, Hart DJ, Terry JM, Belgrader P, Ziraldo SB, Mikkelsen TS, Harbury PB, Glenn JS, Garcia KC, Davis MM, Baric RS, Sabatti C, и др.
. Идентификация предшественников и инфекция SARS-CoV-2 в органоидах дистальных отделов легких человека. Природа. 2020; 588: 670–675. doi: 10.1038/s41586-020-3014-1. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
62. Сакс Н., Папаспиропулос А., Зомер-ван Оммен Д.Д., Хео И., Боттингер Л., Клэй Д., Вебер Ф., Хюльс-Принс Г., Якобашвили Н., Аматнгалим Г.Д., де Лигт Дж., Ван Хек А., Прост Н., Вивин М.С., Любимова А., Тивен Л., Дерахшан С., Корвинг Дж., Бегтел Х., Деккерс Дж.Ф., Кумават К., Рамос Э., ван Остерхаут М.Ф., Офферхаус Г.Дж., Винер Д.Дж., Олимпио Э.П., Дейкстра К.К., Смит Э.Ф., ван дер Линден М. , Джаксани С. и др. Долгосрочное расширение органоидов дыхательных путей человека для моделирования заболеваний. EMBO J. 2019; 38:e100300. doi: 10.15252/embj.2018100300. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
63. Паскини М., Ким С.Ф. Органоид дыхательных путей — это навсегда. EMBO J. 2019; 38:e101526. doi: 10.15252/embj.2019101526. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
64.
Clevers H. Моделирование развития и болезней с помощью органоидов. Клетка. 2016; 165:1586–1597. doi: 10.1016/j.cell.2016.05.082. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
65. Рамамурти П., Томас С.М., Кошик Г., Субраманиам Д., Честейн К.М., Дхар А., Тауфик О., Каси А., Сан В., Рамалингам С., Гуневардена С., Умар С., Маммен Дж. М., Падхье С. Б., Вейр С. Дж., Дженсен Р. А., Ситтампалам Г. С., Анант С. Метастатическая опухоль в чашке, новый многоклеточный органоид для изучения колонизации легких и прогнозирования терапевтического ответа. Рак Рез. 2019;79:1681–1695. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-18-2602. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
66. Strikoudis A, Cieslak A, Loffredo L, Chen YW, Patel N, Saqi A, Lederer DJ, Snoeck HW. Моделирование фиброзной болезни легких с использованием 3D-органоидов, полученных из плюрипотентных стволовых клеток человека. Cell Rep. 2019; 27:3709–3723.e3705. doi: 10.1016/j.celrep.2019.05.077. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
67.
Wang J, Li X, Chen H. Органоидные модели регенерации легких и рака. Рак Летт. 2020;475:129–135. doi: 10.1016/j.canlet.2020.01.030. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
68. Surolia R, Li FJ, Wang Z, Li H, Dsouza K, Thomas V, Mirov S, Perez-Sala D, Athar M, Thannickal VJ, Antony VB. Сборка промежуточных филаментов виментина регулирует инвазию фибробластов при фиброгенном повреждении легких. Взгляд JCI. 2019;4:e123253. doi: 10.1172/jci.insight.123253. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
69. Kim M, Mun H, Sung CO, Cho EJ, Jeon HJ, Chun SM, Jung DJ, Shin TH, Jeong GS, Kim DK, Choi EK, Jeong SY, Taylor AM, Jain S, Meyerson M, Jang SJ. Органоиды рака легких, полученные от пациентов, как модели рака in vitro для терапевтического скрининга. Нац коммун. 2019;10:3991. doi: 10.1038/s41467-019-11867-6. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
70. Schwank G, Koo BK, Sasselli V, Dekkers JF, Heo I, Demircan T, Sasaki N, Boymans S, Cuppen E, van der Ent CK , Nieuwenhuis EE, Beekman JM, Clevers H.
Функциональное восстановление CFTR с помощью CRISPR/Cas9 в органоидах стволовых клеток кишечника у пациентов с муковисцидозом. Клеточная стволовая клетка. 2013; 13: 653–658. doi: 10.1016/j.stem.2013.11.002. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
71. Ruan J, Hirai H, Yang D, Ma L, Hou X, Jiang H, Wei H, Rajagopalan C, Mou H, Wang G, Zhang J, Li K, Chen YE, Sun F, Xu J. Эффективное редактирование генов в основных локусах мутаций CFTR. Молекулярные нуклеиновые кислоты. 2019;16:73–81. doi: 10.1016/j.omtn.2019.02.006. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
72. Porotto M, Ferren M, Chen YW, Siu Y, Makhsous N, Rima B, Briese T, Greninger AL, Snoeck HW, Moscona A. Authentic моделирование инфекции респираторного вируса человека в органоидах легких, полученных из плюрипотентных стволовых клеток. МБио. 2019;10:e00723-19. doi: 10.1128/mBio.00723-19. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
73. Hui KPY, Ching RHH, Chan SKH, Nicholls JM, Sachs N, Clevers H, Peiris JSM, Chan MCW.
Тропизм, способность к репликации и врожденные иммунные реакции вируса гриппа: анализ органоидов дыхательных путей человека и культур бронхов ex-vivo. Ланцет Респир Мед. 2018; 6: 846–854. doi: 10.1016/S2213-2600(18)30236-4. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
74. Zhou J, Li C, Sachs N, Chiu MC, Wong BH, Chu H, Poon VK, Wang D, Zhao X, Wen L, Song W, Yuan S, Wong KK, Chan JF, To KK, Chen Х., Клеверс Х., Юэн К.Ю. Дифференцированные органоиды дыхательных путей человека для оценки инфекционности нового вируса гриппа. Proc Natl Acad Sci USA. 2018;115:6822–6827. doi: 10.1073/pnas.1806308115. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
75. Bui CHT, Chan RWY, Ng MMT, Cheung MC, Ng KC, Chan MPK, Chan LLY, Fong JHM, Nicholls JM, Peiris JSM, Chan МСВ. Тропизм вирусов гриппа В в эксплантатах дыхательных путей человека и органоидах дыхательных путей. Евро Респир Дж. 2019;54:1
8. doi: 10.1183/13993003.00008-2019. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
76.
Lamers MM, van der Vaart J, Knoops K, Riesebosch S, Breugem TI, Mykytyn AZ, Beumer J, Schipper D, Bezstarosti K, Koopman CD, Groen N, Ravelli RBG, Duimel HQ, Demmers JAA, Verjans G, Koopmans MPG, Muraro MJ, Peters PJ, Clevers H, Haagmans BL. Органоидная бронхиоальвеолярная модель инфекции SARS-CoV-2 человеческих альвеолярных клеток типа II. EMBO J. 2021;40:e105912. doi: 10.15252/embj.2020105912. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
77. Han Y, Duan X, Yang L, Nilsson-Payant BE, Wang P, Duan F, Tang X, Yaron TM, Zhang T, Уль С., Брэм И., Ричардсон С., Чжу Дж., Чжао З., Редмонд Д., Хоутон С., Нгуен Д.Т., Сюй Д., Ван Х., Джессурун Дж., Борчук А., Хуан И., Джонсон Дж.Л., Лю И., Сян Дж., Ван Х. , Cantley LC, tenOever BR, Ho DD, Pan FC, Evans T, Chen HJ, Schwartz RE, Chen S. Идентификация ингибиторов SARS-CoV-2 с использованием органоидов легких и толстой кишки. Природа. 2021; 589: 270–275. doi: 10.1038/s41586-020-2901-9. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
78.
Wang J, Li X, Wang A, Zhao F, Wu Q, Li L, Yu H, Wu J, Chen H. Технология органоидов демонстрирует эффект потенциальных лекарств от COVID-19 на регенерацию легких. Селл Пролиф. 2020;53:e12928. doi: 10.1111/cpr.12928. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
79. Fonseca KL, Rodrigues PNS, Olsson IAS, Saraiva M. Экспериментальное изучение туберкулеза: от моделей животных до сложных клеточных систем и органоидов. PLoS Патог. 2017;13:e1006421. doi: 10.1371/journal.ppat.1006421. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
80. Heo I, Dutta D, Schaefer DA, Iakobachvili N, Artegiani B, Sachs N, Boonekamp KE, Bowden G, Hendrickx APA, Willems RJL, Peters PJ, Riggs MW, O’Connor R, Clevers H. Моделирование Cryptosporidium инфекция в органоидах тонкого кишечника и легких человека. Нат микробиол. 2018;3:814–823. doi: 10.1038/s41564-018-0177-8. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
81. Min S, Kim S, Cho SW. Моделирование желудочно-кишечного тракта с использованием органоидов, созданных с клеточными и микробиотными нишами.
Эксп Мол Мед. 2020; 52: 227–237. doi: 10.1038/s12276-020-0386-0. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
82. Уильямсон И.А., Арнольд Дж.В., Самса Л.А., Гейнор Л., ДиСальво М., Коккиаро Дж.Л., Кэрролл И., Азкарат-Перил М.А., Ролз Дж.Ф., Олбриттон Н.Л., Магнесс С.Т. Платформа для микроинъекций органоидов с высокой пропускной способностью для изучения микробиоты желудочно-кишечного тракта и физиологии просвета. Селл Мол Гастроэнтерол Гепатол. 2018;6:301–319. doi: 10.1016/j.jcmgh.2018.05.004. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
83. Shojaie S, Ermini L, Ackerley C, Wang J, Chin S, Yeganeh B, Bilodeau M, Sambi M, Rogers I, Rossant J, Bear CE, Post M. Бесклеточные каркасы легких направляют дифференцировку энтодермы в функциональные эпителиальные клетки дыхательных путей: потребность в протеогликанах HS, связанных с матриксом. Представитель стволовых клеток 2015; 4:419–430. doi: 10.1016/j.stemcr.2015.01.004. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
84.
Leeman KT, Pessina P, Lee JH, Kim CF. Мезенхимальные стволовые клетки усиливают альвеолярную дифференцировку в культурах легочных органоидов-предшественников. Научный доклад 2019; 9: 6479. doi: 10.1038/s41598-019-42819-1. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
85. Nichols JE, Niles JA, Vega SP, Argueta LB, Eastaway A, Cortiella J. Моделирование легких: дизайн и разработка тканевой инженерии макро- и микрофизиологические модели легких для использования в исследованиях. Экспер Биол Мед. 2014;239: 1135–1169. doi: 10.1177/1535370214536679. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
86. Исхахак М., Хилл Дж., Амин К., Вубкер Л., Эрнандес А., Митрофанова А., Слоан А., Форнони А., Агарвал А. Модульная микрофизиологическая система для моделирования функции биологического барьера . Фронт Биоэнг Биотехнолог. 2020;8:581163. doi: 10.3389/fbioe.2020.581163. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
87. Pasman T, Baptista D, van Riet S, Truckenmuller RK, Hiemstra PS, Rottier RJ, Stamatialis D, Poot AA.
Разработка пористых и гибких мембран PTMC для моделей органов in vitro, изготовленных путем фазового разделения, вызванного испарением. Мембраны. 2020;10:330. дои: 10.3390/мембраны10110330. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Искусство | Легкие
Легкие
Общая вена Copyright 2009
Ashley Davidoff MD
Также перейдите в Medical Art-Lungs
Говоря о виноградеВ этом художественном изображении сердца и легких используются формы фруктов и овощей для создания изображения груди. Легкие сделаны из винограда, легочные артерии — из моркови, ребра — из банановой кожуры, а жар — из красного перца. 02032p Эшли Давидофф MD
TTagsheCommonVein.netЧасти легких
82738p грудная клетка легкое соединительная ткань легочная артерия легочная вена аксиальная интерстициальная ткань вторичная долька доли сегменты трахея бронхи междольковые перегородки многоугольная Ashley Davidoff MD
TheCommonVein.
net Альвеолы – центр легочной вселенной поддерживать движение воздуха включают внешнюю костную клетку, мышечный слой, представленный темно-бордовым цветом, плевральный комплекс (оранжево-желто-оранжевый), легкое (синий) и поверхностно-активное вещество в альвеолах. (розовый)
42530b05b09b01a08
Эшли Давидофф, доктор медицины
TheCommonVein.netЛегкие – как они живут и дышат
Грудная клетка окружена кольцом мышц (бордового цвета), состоящим из различных групп, которые работают согласованно. Диафрагма является рабочей лошадкой дыхательных мышц и показана в виде толстой темно-бордовой полосы внизу. 42530b05b09b14 Ashley Davidoff MD
TheCommonVein.netGingko Chest
Трахеобронхиальное дерево
Дерево, цветок, трахеобронхиальное дерево, легкие бронхов трахеи
Ashley Davidoff Art 32620b14.800b02p
Ashley Davidoff MD
TheCommonVein.netEvolution of the Gingko Chest
Tracheobronchial Tree
lung bronchus tracheobronchial tree airway tree the common vein applied biology
Ashley Davidoff MD
TheCommonVein.
net 32620c02.800Pulmonary Trunk
46649b04b.800 lung pulmonary artery pulmonary trunk Ashley Davidoff MD
TheCommonVein.netPulmonary Trunk
46649b11.800b01 легкое легочное Ashley Davidoff MD
TheCommonVein.netPulmonary Trunk
46649c01.800 легкое легочная артерия легочный ствол
Эшли Давидофф, доктор медицины
TheCommonVein.netЛегкие и рентген
42444b18.8 анатомия легких, рентген
Эшли Давидофф, доктор медицины
TheCommonVein.netТрубки тела
32368 Эшли Давидофф, доктор медицины
TheCommonVein.netЭтот коллаж отражает спектр дыхательной системы от макроскопического и анатомического к микроскопическому — континуум структуры. Изображение 2 представляет собой посмертный образец, взятый спереди и чуть выше. На нем показаны трахея и бронхи, снабжающие два легких вверху, с дугой аорты и сердечными структурами в середине и внизу. Обратите внимание, как розовые легкие в этом образце несчастного ребенка с врожденным пороком сердца. Изображение 3, рентген грудной клетки, показывает прозрачные легкие в грудной полости, а изображение 4 представляет собой схему правого легкого с тремя долями и левого легкого с двумя долями.
На следующем изображении показаны две дыхательные единицы легкого, каждая из которых называется легочной долькой (5). Долька состоит из центральной бронхиолы (светло-голубой) и легочной артериолы (темно-синий), окруженных заполненным воздухом ацинусом (бирюзовым) с его периферическими венулами. (красный) Ацинус увеличен на следующем изображении (6), на котором видны сначала трубчатые терминальные бронхиолы, разветвляющиеся на респираторные бронхиолы, альвеолярные мешочки и, наконец, виноградоподобные альвеолы. Организация соединительной ткани легкого показана на изображении 7. Наконец, мы переходим к гроздьям или альвеолам легкого с окружающими сосудами (8), и на 9 изображена единственная альвеола.. Кажется, что воздух проходит долгий путь, но система может доставлять воздух снаружи и снаружи за один вдох и еще быстрее обменивать газы на капиллярном уровне. Это замечательная система. 42651c
ключевые слова легкие грудная клетка
Ashley Davidoff TheCommonVein.net
Слух глазами
32647 Davidoff
Ashley Davidoff MD
TheCommonVein.
net бронхов к терминальным бронхиолам, переходящим в альвеолы через альвеолярные мешочки. 32645b04b04 легкое D
Эшли Давидофф, доктор медицины
TheCommonVein.net 32645a10.800Асбестовые тела – художественное впечатление
Эшли Давидофф, доктор медицины
TheCommonVein.net.
32697Дерево в бутоне
Дерево в бутоне ноцицепторы свободные нервные окончания деревья в теле
Эшли Давидофф, доктор медицины
TheCommonVein.net87559pb04b07b.8sФорма винограда
Заснеженные красные ягоды – контраст между вишнево-красным и белоснежным делает их восхитительными .
Эшли Давидофф MD
TheCommonVein.net
02160p Альвеолы легких — фабричные рабочие
На этом рисунке изображено скопление альвеол, окруженных капиллярной сетью, питаемых артериолой (синим цветом) и дренируемых венулой (красным цветом). На втором изображении показан обмен живительного кислорода на побочный продукт метаболической активности – углекислый газ0186 Пыхтящие Пыхтящие органы, поддерживающие поступление кислорода и выводящие из организма токсичный углекислый газ
Эшли Давидофф, доктор медицины, одышка и ХОБЛ Эшли Давидофф
Легкие – Анатомия коллажа
9) — континуум структуры — каждый элемент как отдельная единица, которые вместе работают на гармонию здоровья.
Изображение 2 представляет собой посмертный образец, показывающий трахею и проксимальные бронхи, входящие в легкое. Рентгенограмма грудной клетки, показывающая легкие черным цветом в грудной полости (3), сопровождается диаграммой той же структуры (4), вторичной долькой (5), ацинусом (6), соединительной опорной тканью (7), а затем альвеолы (8,9). Предоставлено доктором медицины Эшли Давидофф. код нормальная анатомия легкие легочные трахеи бронхи бронхи CXR плоская пленка доли вторичные дольки дыхательные бронхиолы терминальные бронхиолы альвеолы альвеолы капилляр рисунок коллаж сердца и легких использует форму фруктов и овощей для создания образа грудной клетки. Легкие сделаны из винограда, легочные артерии — из моркови, ребра — из банановой кожуры, а жар — из красного перца. aka 02032p Davidoff Art
от Eshley Davidoff MD
Alveolus
Alveolusи Bonds
Ashley Davidoff Mdtype I Pneumocyt легочная вселенная
Пять основных слоев, обеспечивающих движение воздуха, включают внешнюю костную клетку, мышечный слой, представленный темно-бордовым цветом, плевральный комплекс (оранжево-желто-оранжевый), легкое (синий) и сурфактант в альвеолах.
(розовый) 42530b05b09b01a08 Ashley Davidoff art
by Ashley Davidoff MDCКЛЕТКИ АЛЬВЕОЛ
Существует два типа клеток, выстилающих альвеолы: Альвеолярные клетки типа I (пневмоциты) представляют собой плоскоклеточные клетки. Они обеспечивают газообмен. Альвеолярные клетки 2 типа имеют кубическую форму и секретируют сурфактант.
Эшли Давидофф MD Клетки альвеол и капилляры легких
«Клетки альвеол и капилляры легких» показывает альвеолы с одноклеточной выстилкой и связанными артериолами, капиллярами и венозным кровообращением. Прохладный свежий воздух поступает в альвеолы, а кислород поступает в артериолы с голубой кровью, превращаясь в венулы с красной кровью. Двуокись углерода проходит через одноклеточные альвеолы и попадает в дыхательные пути на выдохе
Эшли Давидофф MD Альвеолярные клетки и капилляры легких
«Альвеолярные клетки и капилляры легких» показывает альвеолу с выстилкой из одной клетки и ассоциированным артериолом, капиллярами и венозным кровообращением.
Прохладный свежий воздух поступает в альвеолы, а кислород поступает в артериолы с голубой кровью, превращаясь в венулы с красной кровью. Двуокись углерода течет через одноклеточные альвеолы и попадает в дыхательные пути для выдоха0186 «Альвеолярные клетки и капилляры легких» показывает альвеолу с одноклеточной выстилкой и ассоциированным артериолом, капиллярами и венозным кровообращением. Прохладный свежий воздух поступает в альвеолы, а кислород поступает в артериолы с голубой кровью, превращаясь в венулы с красной кровью. Двуокись углерода течет через одноклеточные альвеолы и попадает в дыхательные пути для выдоха0186 На диаграмме выше показана альвеола (а), выстланная одним слоем плоскоклеточных клеток, окруженная капилляром с эритроцитами, который также выстлан одним слоем плоскоклеточных эндотелиальных клеток. Изображения ниже показывают прогрессивное увеличение альвеолярной стенки, демонстрируя два тонких слоя альвеолярной мембраны. Courtesy Ashley Davidoff 2019
легкие-0028-низкое разрешение
Альвеолы под микроскопом
При малом увеличении на периферии нормального легкого видна нормальная выстилка альвеол, окружающих воздушные полости.
Слой висцеральной плевры показан справа на изображении
Мелкие дыхательные пути и сопутствующие кровеносные сосуды (со свернувшейся кровью)
Ashley Davidoff MD
легкие-0031-hi-res
Скопление альвеол
3
Ацинус
Ацинус3000-4000 ацинусов объединяются в ацинус. Ацинусы образованы респираторными бронхиолами и альвеолярными ходами, а также альвеолами
Ashley Davidoff MDAcinus
От латинского: виноград, ягода.
Ацинус, по морфологии напоминающий гроздь винограда
Эшли Давидофф MDAcinus
От латинского: виноград, ягода.
Верхнее изображение показывает ацинус и малину
Нижнее изображение ацинус и ежевику
Ashley Davidoff MD
Изображение малины любезно предоставлено Brave New World и изображение ежевики любезно предоставлено BekoАцинус,
Проток и артерия
Легочная артериола ( pa) сопровождает дольковую бронхиолу (lb). Артериола переносит деоксигенированную кровь, а бронхиола переносит кислород из трахеи в альвеолы.
Они расходятся в альвеолах
Ashley Davidoff MDM Несколько ацини
На этой диаграмме показана схема ветвления трахеобронхиального дерева, которое простирается от бронхов до терминальных бронхиол, переходящих в альвеолы через альвеолярные мешочки. Courtesy Ashley Davidoff MD 32645b04b04 легкое Дерево Давидоффа Ветвящаяся альвеола альвеолы нормальный рисунок Davidoff art 32645a10.800
by Ashley Davidoff MD
Ацинус,
Проток и артерия
Легочная артериола сопровождает дыхательные пути из трахеи в дыхательные пути. альвеолы. Они расходятся в альвеолах, где легочные венулы затем забирают обогащенную кислородом кровь из капиллярной сети вокруг альвеол обратно в левое предсердие.
Близкое расположение дыхательных путей и легочной артерии и их близкие размеры помогают в радиологии, во-первых, для идентификации этих структур и, во-вторых, для определения таких заболеваний, как сердечная недостаточность и бронхоэктазы.
Ацинус, как показано на этом изображении, определяется как единица легкого, состоящая из одной респираторной бронхиолы первого порядка, которая стягивает группу альвеол, напоминающую гроздь винограда или ягоды (ацинус на латыни означает ягода).
Дольковая бронхиола (lb) разветвляется на терминальную бронхиолу (tb), которая затем разветвляется на респираторную бронхиолу первого порядка (rb). Последующее разветвление после респираторной бронхиолы включает по порядку альвеолярный проток (ad), альвеолярный мешок (as) и, наконец, ягодообразные альвеолы. Courtesy Ashley Davidoff 2019
легки-0033-low resПротоковая система ацинуса
На схеме показана протоковая система ацинуса, начинающаяся с терминальной бронхиолы с клещевой стенкой (tb), которая является последним протоком проводящей системы дыхательных путей. . Респираторная бронхиола (rb) входит во вторичную дольку и является первым протоком, способным к диффузии. Может быть 3 порядка rb, и они разветвляются на альвеолярные протоки, которые, в свою очередь, разветвляются на альвеолярные мешочки, пока не достигнут альвеол, что является конечным пунктом назначения.
Courtesy Ashley DAvidoff MD 2019
легкие-0032-низкий resACINUS
Ацинус с терминальной бронхиолой, респираторной бронхиолой и альвеолярными ходами.
Эшли Давидофф, доктор медицинских наук Вторичная долька
От 10 до 30 ацинусов объединяются, чтобы сформировать вторичную дольку диаметром от 0,5 до 2 см. Он состоит из одной долевой бронхиолы (lb) и сопровождается артериолами, венулами, лимфатическими сосудами и соединительной тканью. Это важно в клинической радиологии, поскольку многие структуры могут быть идентифицированы в норме и, в частности, при заболевании, что позволяет идентифицировать и охарактеризовать многие болезненные процессы.
Courtesy Ashley Davidoff MD
легки-0035-низкое разрешение
Вторичная долька
Вторичная долькаВторичная долька расположена в соединительнотканной структуре, в которой проходят лимфатические и венулярные притоки. Вместе эти 3 структуры образуют междольковую перегородку.
В каркас входит долевая артериола в сопровождении долевой бронхиолы, и все они идут вместе и образуют междольковые перегородки. Эта структура имеет размеры от 0,5 см до 2 см и видна на компьютерной томографии.
Это важно в клинической радиологии, поскольку многие структуры могут быть идентифицированы в норме и, в частности, при заболевании, что позволяет идентифицировать и характеризовать многие патологические процессы.
Courtesy Ashley Davidoff MD
легки-0036-низкое разрешениеЭто изображение представляет собой панорамный вид легкого, показывающий в данном случае почти прямоугольные вторичные дольки, окруженные междольковыми перегородками (кремовые границы). Показаны дистальные бронхиолы (бирюзовые) и легочные артериолы (ярко-синие). в центре дольки в правом нижнем углу. Ветви этих двух структур показаны во вторичной дольке с ацинарными дыхательными путями, показанными бирюзовым цветом, а предполагаемый курс художественно выведен королевским синим цветом. Внутри междольковых перегородок (светло-розовые) остатки Легочные венулы (красный – предполагаемый) и лимфатические сосуды (желтый предполагаемый) идут в направлении, противоположном артериолам и дыхательным путям Courtesy Armando Fraire MD code легкое легочные альвеолы альвеолы вторичные дольки междольковые перегородки вены лимфатические гистология интерстиций интерстициальные нормальные авторские права 2009все права защищеныВторичная долька
Вот изображение многогранной легочной дольки снаружи сбоку.
Courtesy Ashley Davidoff MD 42449b02СЕГМЕНТЫ ЛЕГКИХ
Вторичные дольки соединяются и объединяются, связанные через дыхательные пути, кровеносные сосуды, лимфатические сосуды и нервы, образуя сегменты в легких
В правом легком имеется десять бронхолегочных сегментов: три в верхняя доля, две в средней доле и пять в нижней доле. Некоторые из сегментов могут сливаться в левом легком, образуя обычно восемь-девять сегментов (четыре-пять в верхней доле и четыре-пять в нижней доле).0186 Эшли Давидофф MD
АСИММЕТРИЧНЫЙ ВЕТВЛЕНИЕ – ПРАВОЕ КОРОТКОЕ И КОЛЕСНОЕ И ЛЕВОЕ ДЛИННОЕ И ТОНКОЕ С СЕГМЕНТАМИ ЛЕГКИХ
Классический образец ветвления многих деревьев
Эшли Давидофф MDLДОЛИ ЛЕГКИХ
Правое легкое имеет верхнюю среднюю и нижнюю долю, а левое легкое имеет левую верхнюю долю, которая включает сегмент язычка и левую нижнюю долю0186 by Ashley Davidoff MDL. ЛЕГКИЕ ВНУТРИ ГРУДНОЙ ПОЛОСТИ
by Ashley Davidoff M.D. ЛЕГКИЕ В ГРУДНОСТИ (3D)
. by Ashley Davidoff.
