Как рисовать лошадь — YouLoveIt.ru
Научится правильно нарисовать лошадь достаточно сложная задача, поскольку требуется точное соблюдение пропорций. Но если рисовать лошадь поэтапно, то вполне можно ее правильно нарисовать даже детям. На этом уроке, мы научимся рисовать стоящую лошадь, шаг за шагом, вырисовывая ее очертания. Картинку бегущей лошади рисовать сложно даже художнику, поэтому сделайте, вначале рисунок лошади, которая стоит неподвижно. Самые сложные элементы рисунка лошади — это задние ноги и голова, обратите на эти детали особое внимание.
Вначале нарисуем простой прямоугольник, величина его будет задавать величину туловища лошади. Он поможет нарисовать правильно расположение ног и шеи лошади. Только рисуйте его в середине вашего листа, чтобы вместились остальные детали. Если вы хотите нарисовать пони, то рисуйте прямоугольник чуть шире.
Дальше нарисуем два овала, как показано на рисунке. Первый овал расположим по горизонтали, для передних ног и грудной клетки лошади.
В следующем шаге нарисуем основные формы шеи, ног и формы головы рисунка лошади. Это поможет нам нарисовать основные пропорции, и послужит ключевой точкой для рисования контура. Нарисуем треугольник на шеи лошади, круг для щек и квадрат для морды лошади. Это все, что вам нужно на данный момент, остальные контуры мы добавим позже.
Следующий этап — нарисуем две прямые линии для передних ног, и две наклонные линии для задних, с шариками на суставах, как показано на моем рисунке. Нарисуйте короткие наклонные линии для щетки лошади (лодыжки) и треугольники для копыт.
Теперь добавьте к основным контурам несколько линий карандашом, обведите туловище и ноги, чтобы рисунок выглядел уже как лошадь.
Все остальное довольно не сложно дорисовать самостоятельно, глядя на мой рисунок лошади.Голова и шея: присоединиться к квадрату у носа к щеке — круг, чтобы получилась форма головы лошади. Добавим уши. Нарисуем линию, соединяющую пышные щеки к шее, что сделает нижнюю часть шеи треугольник немного толще. Нарисуйте изогнутую линию над шеей.
Тело: уравняем грудь лошади в верхней части передней ноги. Присоединим к груди и задней части сверху линиями, что получилась кривая.
Ну вот теперь рисунок напоминает лошадь, хотя еще и не окончен.
Добавим еще несколько деталей к рисунку, чтобы закончить рисование лошади или пони.
Сначала нарисуем голову лошади. Нарисуйте глаза — это круг с треугольной крышей. Нарисуем рот — это прямая линия с небольшим загибом на конце. Ноздри — это простая круглая линия. Копыта нарисуем в форме параллелограмма, а затем сотрем верхний правый угол.
Теги: Как рисовать Лошадь Урок Как рисовать животных Как рисовать лошадь Рисование
Источник: lookmi
Рассказать друзьям | Комментировать |
Также интересно
Как нарисовать лошадь в движении карандашом поэтапно
СОВЕТ: Рисуйте обдуманно, ставьте для себя задачи, анализируйте.
Спасибо +14969
Главная » Животные » Лошади
Уже нарисовал +7 Хочу нарисовать +7 Спасибо +81
Шаг 1.
Как рисовать лошадь. Первым делом нужно плавными аккуратными линиями обозначить границы будущего рисунка лошади.Шаг 2.
Затем в левом верхнем углу образовавшегося прямоугольника нарисуйте голову лошади в виде треугольника со скругленными краями.
Шаг 3.
ретьим шагом изобразите с помощью овалов грудную клетку и круп коня.
Шаг 4.
Потом можно нарисовать овал, соединяющий предыдущие элементы — живот.
Шаг 5.
Как рисовать лошадь.С помощью точек и прямых обозначьте строение лошадиных ног. Элементы конструкции тела животного помогут избежать ошибок. Обратите внимание, что пятки у лошади располагаются довольно высоко.
Шаг 6.
Постепенно начинайте прорисовывать контуры передних ног.
Шаг 7.
Аналогично поступите с задними ногами. Изобразите копыта в виде трапеции.
Шаг 8.
Теперь можно приступить к прорисовке мощной и крепкой шеи. Однако не забывайте, что лошадям присуща необыкновенная грация. Не сделайте шею слишком массивной.
Шаг 9.
Следующим шагом можно избавиться от ненужных линий построения, стерев их ластиком.
Шаг 10.
Самое интересное — рисовать голову. Как правило, у лошадей очень большие, выразительные глаза, крупные ноздри и красивая линия профиля.
Шаг 11.
Еще одна характерная деталь лошадиного облика — хвост. Его можно сделать длинным и развевающимся, коротко стриженным или убранным в косичку. Все зависит от замысла автора рисунка.
Шаг 12.
Затем сотрите окончательно мешающие Вам линии. Прорисуйте мышцы коня, это придаст его виду силы и значимости.
Шаг 13.
Добавьте гриву. Не прорисовывайте отдельно каждый волосок, лучше передавать весь объем в целом.
Шаг 14.
Аккуратными штрихами изобразите линии сгибов суставов на ногах коня.
Шаг 15.
С помощью твердомягкого карандаша и растушевки придайте объем получившемуся рисунку.
Автор урока: woman56.ru
Также можете нарисовать
Онлайн-курсы по рисованию
Понравился урок? Жми спасибо и делись с друзьями!!
Уже нарисовал +7 Хочу нарисовать +7 Спасибо +81
Другие уроки из раздела Животные
Комментарии
ТОП уроки за сегодня
Открытка к 9 мая
2 0
Пасхальный кулич
160 2
Вечный огонь
5 0
Рисуем аниме глаза
260 22
Солдат
16 0
Руки человека
57 1
Рисуем танк Т-34 и Т-34-85
699 11
ТОП пользователи
vikl-art
Рейтинг 19827
Rikk
Рейтинг 9156
admin
Рейтинг 8858
AppeLsinRi
Рейтинг 4156
Sofialebedenkova
Рейтинг 3451
HelenaArch
Рейтинг 2934
IceKream1234
Рейтинг 2599
Более высокий процент лошадиной сыворотки в культуральной среде блокирует прикрепление клеток PC12
- Список журналов
- Выборочный депозит ФСГ
- PMC7031818
В качестве библиотеки NLM предоставляет доступ к научной литературе.
Биотехнологии. 2019 декабрь; 67(6): 256–258.
Опубликовано в сети 16 октября 2019 г. doi: 10.2144/btn-2019-0073
1 и *, 1
0 Информация об авторе Примечания к статье клеточная линия феохромоцитомы, PC12 , стала основной модельной системой для изучения многих аспектов нейронной активности с момента ее разработки и описания в 19 веке.70-х [1]. Одним из его наиболее полезных свойств является то, что после стимуляции фактором роста нервов (NGF) эти клетки расширяют отростки или нейриты в программе дифференцировки, которая обратима при удалении NGF. Опосредованная NGF дифференцировка включает образование функциональных синапсов, а также электрическую возбудимость [2,3]. Благодаря этим замечательным свойствам клетки PC12 стали важным инструментом для раскрытия механизмов дифференцировки нейронов, а также сигнального пути NGF.
Клетки PC12 также широко использовались для изучения экзоцитоза, особенно катехоламинов (обзор в [4]). Согласно их первоначальной характеристике [1], клетки PC12 имеют круглую или многоугольную форму, слабо слипшиеся и склонны к росту в виде скоплений. Мы сообщаем здесь, что их клеточная морфология и адгезия сильно зависят от процентного содержания лошадиной сыворотки, содержащейся в их культуральной среде. В то время как исходные условия выращивания в Greene и Tischler указывают на добавление 10% лошадиной сыворотки и 5% эмбриональной телячьей сыворотки (FCS) в среду для выращивания, что подкрепляется рекомендациями хранилища культур, ATCC, не все исследователи используют одинаковое количество. лошадиной сыворотки в своих культурах PC12. Хотя 10% лошадиная сыворотка является наиболее распространенной, использовались количества от 5% [5] до 15% [6]. Кроме того, причины использования определенной концентрации лошадиной сыворотки обычно не приводятся, и в литературе также отсутствует достаточное объяснение ее эффектов.
Клетки PC12 выращивали в среде DMEM с добавлением увеличивающегося процентного содержания лошадиной сыворотки (0, 2,5, 5, 10 и 15%). Использовали два разных источника лошадиной сыворотки: донорскую лошадиную сыворотку от Corning или HyClone (GE Healthcare Life Sciences). Однако, поскольку здесь основное внимание уделяется процентному содержанию лошадиной сыворотки, а не различиям между производителями (или партиями), эти два источника упоминаются здесь просто как лошадиная сыворотка 1 и 2, в произвольном порядке по отношению к производителям, указанным выше. Процент клеток, которые были слабо прикреплены (округлые), определяли для каждого условия культивирования, как описано в . Через 24 часа после посева (A) по мере увеличения процента лошадиной сыворотки наблюдалось статистически значимое дозозависимое увеличение процента свободно прикрепленных клеток (p < 0,001 для всех сравнений, кроме 0 против 2,5% лошадиной сыворотки).
, для которого р = 0,103). При использовании 10 и 15 % лошадиной сыворотки большинство клеток были слабо прикреплены к 24-часовому моменту времени. Через 48 часов после посева (B) с лошадиной сывороткой от 0 до 10 % большинство клеток были многоугольными и прикрепленными, при этом 10 % лошадиной сыворотки демонстрировали значительно больше клеток, которые были слабо прикреплены, чем более низкие проценты (p <0,001 в сравнение с 0, 2,5 и 5 % лошадиной сыворотки). При 15% лошадиной сыворотке большинство клеток были слабо прикреплены через 48 ч после посева (p<0,001 для всех сравнений). Эти результаты показывают, что более высокие проценты лошадиной сыворотки в культуральной среде предотвращают прикрепление и распространение клеток PC12 в направлении полигональной морфологии и приводят к более свободно прикрепленным (округлым) клеткам.
Открыть в отдельном окне
Процент свободно прикрепленных (округлых) клеток PC12.
Клетки PC12 высевали в стандартные чашки для культивирования в среду, содержащую указанную комбинацию лошадиной сыворотки и эмбриональной телячьей сыворотки.
Изображения, полученные с помощью инвертированного микроскопа Zeiss Primovert (при 40-кратном увеличении), оснащенного цифровой камерой высокого разрешения Excelis, после (A) 24 ч и (B) 48 ч, анализировали вслепую, подсчитывая процент свободно прикрепленных клеток. , судя по ореолу вокруг клеток на изображении и отсутствию отростков от тела клетки. Количество клеток из трех изображений для каждой комбинации усреднялось. Для статистического анализа ANOVA с Tukey HSD 9Было проведено 0043 апостериорных тестов. (Примечание: как в (A и B), так и в не было статистически значимой разницы между лошадиными сыворотками 1 и 2 при любом процентном содержании лошадиной сыворотки). (C) Репрезентативное изображение, показывающее слабо прикрепленные клетки с ореолами и прикрепленные (многоугольные) клетки.
Чтобы определить, оказывают ли опосредованные лошадиной сывороткой различия в клеточной морфологии функциональное влияние на клетки PC12, были проведены анализы роста нейритов, как описано в .
Предварительная инкубация с диапазоном процентного содержания лошадиной сыворотки не показала статистически значимой разницы в росте нейритов. Несмотря на то, что наблюдался значительный рост нейритов после предварительной инкубации со всеми процентными содержаниями лошадиной сыворотки (включая 0%), вариабельность была выше при использовании более низких процентных значений (т. %), по-видимому, способствовал немного большему росту нейритов, в лучшем случае это была предельная значимость, при этом сравнение предварительной инкубации 5 % и 10 % лошадиной сыворотки ближе всего к достижению статистической значимости (p = 0,078). Таким образом, в то время как вариации процентного содержания лошадиной сыворотки приводили к различиям в морфологии клеток PC12 до дифференцировки, опосредованной NGF, они, по-видимому, явно не изменяют способность этих клеток дифференцироваться в ответ на NGF.
Открыть в отдельном окне
Анализ роста нейритов.
Лунки в шестилуночных планшетах инкубировали с 0,5 мл раствора ламинина с концентрацией 20 мкг/мл (Sigma) и давали высохнуть. В лунки добавляли среду DMEM, содержащую указанное процентное содержание лошадиной сыворотки вместе с 5% эмбриональной телячьей сыворотки (по 3 лунки на каждое процентное содержание лошадиной сыворотки). Клетки PC12 (1 × 10 4 клеток) добавляли в каждую лунку и оставляли для прикрепления на 48 часов. Среду заменяли DMEM без сыворотки, добавляли 100 нг/мл NGF (Becton Dickenson) и клетки инкубировали еще 48 часов. С помощью инвертированного микроскопа Zeiss Primovert (при 100-кратном увеличении) получали по пять изображений из каждой лунки. Клетки на каждом изображении подсчитывали, как общие клетки, так и клетки с нейритами, определяемыми как нейроноподобные расширения клеточной мембраны, которые были равны или длиннее одного диаметра клетки. Для статистического анализа ANOVA с Tukey HSD 9Было проведено 0043 апостериорных тестов.
В целом результаты, содержащиеся в данном документе, позволяют предположить, что выбор процентного содержания лошадиной сыворотки, используемый исследователями, в основном является вопросом выбора, отражающим их культурные предпочтения. Поскольку наиболее распространенные проценты используемой лошадиной сыворотки, по-видимому, составляют 10 и 15%, что приводит к довольно схожим показателям роста нейритов, исследователи, которые не используют более слабо прикрепленные (округлые) клетки, наблюдаемые с 15% лошадиной сывороткой, могут быть предпочтительны трипсин для пересева клеток PC12, что позволяет им больше расти в виде суспензионной культуры. Следует отметить, что наше первоначальное наблюдение за измененными характеристиками культуры при переключении источников лошадиной сыворотки, которое заставило нас рассмотреть вопрос об отказе от лошадиной сыворотки, может быть просто устранено путем изменения концентрации лошадиной сыворотки.
Одним из вопросов, заслуживающих дальнейшего изучения, является эффект длительного культивирования клеток PC12 в среде, либо лишенной лошадиной сыворотки, либо содержащей более низкие проценты.
Более прикрепленные многоугольные клетки, наблюдаемые с низким процентным содержанием лошадиной сыворотки (кратковременно) в этом отчете, могут быть связаны с частичной дифференцировкой этих клеток в сторону ненейронного типа клеток, которая может быть обращена вспять путем удаления сыворотки и добавления NGF. В настоящее время неясно, какую роль лошадиная сыворотка играет в культуре клеток РС12, но, учитывая, что РС12 являются клетками-предшественниками и могут дифференцироваться как по хромаффинным, так и по симпатическим нейрональным линиям [1], лошадиная сыворотка может сохранять статус предшественников этих клеток. Наряду с этим лошадиная сыворотка также использовалась для поддержания гемопоэтических клеток-предшественников в культуре, поддерживая их в менее дифференцированном состоянии [7,8], и было замечено, что она блокирует дифференцировку клеток-предшественников печени [9].]. Таким образом, будущие исследования могут дополнительно прояснить влияние лошадиной сыворотки на состояние дифференцировки клеток PC12.
Различия в прикреплении клеток PC12, наблюдаемые при использовании разных источников лошадиной сыворотки, вероятно, связаны с различиями в уровнях некоторых факторов в этих сыворотках. Таким образом, еще одним потенциальным направлением будущих исследований является определение того, какие компоненты лошадиной сыворотки опосредуют эффект, наблюдаемый на прикреплении PC12, и ответственны за наблюдаемые различия. В отличие от человеческой сыворотки, состав которой был охарактеризован [10], сыворотки, используемые в культурах тканей, обычно имеют минимальное определение, и содержащиеся в них белки, липиды и/или факторы роста и гормоны могут различаться в зависимости от источника по многим причинам [11, 12]. Диц и др. [8]. Хотя возможно, что эти соединения могут аналогичным образом воздействовать на клетки PC12, необходима идентификация фактических компонентов лошадиной сыворотки, которые ингибируют прикрепление (и сохраняют статус предшественников), что также позволит выяснить лежащие в основе клеточные пути и механизмы.
Авторы благодарят Бенджамина Уикса (Университет Адельфи) за щедрую поставку клеток PC12, которые были первоначально получены от G Guroff (NIH).
Вклад авторов
Компания JLM провела все эксперименты и большую часть анализа данных. ARS завершила анализ данных, провела статистический анализ и написала рукопись.
Раскрытие информации о финансовых и конкурирующих интересах
Исследование, представленное в этой публикации, было поддержано Национальным институтом рака Национальных институтов здравоохранения (номер награды R15CA1219).92). Авторы не имеют никаких других соответствующих связей или финансового участия с какой-либо организацией или юридическим лицом, имеющим финансовый интерес или финансовый конфликт с предметом или материалами, обсуждаемыми в рукописи, кроме раскрытых.
При написании этой рукописи помощь в написании не использовалась.
Открытый доступ
Эта работа находится под лицензией Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.
0 Unported License. Чтобы просмотреть копию этой лицензии, посетите http://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/
1. Грин Л.А., Тишлер А.С. Создание норадренергической клональной линии клеток феохромоцитомы надпочечников крыс, которые реагируют на фактор роста нервов. проц. Натл акад. науч. США 73(7), 2424–2428 (1976). [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
2. Дихтер М.А., Тишлер А.С., Грин Л.А. Индуцированное фактором роста нервов повышение электрической возбудимости и чувствительности к ацетилхолину клеточной линии феохромоцитомы крыс. Природа 268 (5620), 501–504 (1977). [PubMed] [Академия Google]
3. Шуберт Д., Хайнеманн С., Кидокоро Ю. Холинергический метаболизм и образование синапсов линией нервных клеток крысы. проц. Натл акад. науч. США 74 (6), 2579–2583 (1977). [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
4. Westerink RH, Ewing AG. Клетка PC12 как модель нейросекреции. Акта Физиол. 192(2), 273–285 (2008). [бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
5.
Мартин Т.Ф., Гришанин Р.Н.
Клетки PC12 как модель для изучения регулируемой секреции в нейрональных и эндокринных клетках. Методы Cell Bio.
л71, 267–286 (2003). [PubMed] [Академия Google]
6. Ювоне Т., Эспозито Г., Эспозито Р., Сантамария Р., Ди Роса М., Иззо А.А. Нейропротекторный эффект каннабидиола, непсихоактивного компонента Cannabis sativa, на индуцированную бета-амилоидом токсичность в клетках PC12. Дж. Нейрохим. 89(1), 134–141 (2004). [PubMed] [Google Scholar]
7. Spooncer E, Heyworth CM, Dunn A, Dexter TM. Самообновление и дифференцировка интерлейкин-3-зависимых мультипотентных стволовых клеток модулируются стромальными клетками и сывороточными факторами. Дифференциация 31(2), 111–118 (1986). [PubMed] [Google Scholar]
8. Дитц Т., Шнапка-Хилле Л., Ноак Н. и другие. Продукты фосфолипазы А2 предсказывают гемопоэтическую поддерживающую способность лошадиной сыворотки. Дифференциация 105, 27–32 (2019). [PubMed] [Google Scholar]
9. Hui H, Ma W, Cui J.
и другие.
На метод периодического окрашивания кислотой-Шиффом для определения функции клеток печени воздействует 2% лошадиная сыворотка в индукционной среде. Мол. Мед. Респ.
16(6), 8062–8068 (2017). [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
10. Psychogios N, Hau DD, Peng J. и другие. Метаболом сыворотки человека. PLoS один 6(2), е16957 (2011). [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
11. van der Valk J, Brunner D, De Smet K. и другие. Оптимизация среды для культивирования клеток с определенным химическим составом – замена эмбриональной бычьей сыворотки в методах млекопитающих in vitro . Токсикол. Витр. 24(4), 1053–1063 (2010). [PubMed] [Google Scholar]
12. Бейкер М. Воспроизводимость: уважайте свои клетки! Природа 537(7620), 433–435 (2016). [PubMed] [Академия Google]
Болезни лейкоцитов у лошадей — владельцы лошадей
Версия для владельцев домашних животных
Автор:
Р.
Даррен Вуд
, DVM, DVSc, DACVP, кафедра патобиологии, Ветеринарный колледж Онтарио, Университет Гвельфа
Последний обзор/редакция: март 2019 г. | Изменено, октябрь 2022 г.
Несколько различных типов лейкоцитов Белые кровяные тельца лошадей Функция белых кровяных телец (также называемых лейкоцитами) заключается в защите организма от инфекций. Существует 2 основных типа лейкоцитов: фагоциты и лимфоциты. Фагоциты (от… читать далее , или лейкоциты) встречаются в крови млекопитающих, включая нейтрофилы, лимфоциты, моноциты, эозинофилы и базофилы. Нормальное количество каждого типа лейкоцитов также различается у разных видов.0135 Лейкоцитоз — увеличение общего количества циркулирующих лейкоцитов; лейкопения снижение. Лейкопения у лошадей возникает при герпесвирусной инфекции лошадей, эрлихиозе лошадей, гриппе и иногда на ранних стадиях инфекционной анемии лошадей.
В дополнение к общему увеличению или уменьшению количества лейкоцитов увеличение или уменьшение количества лейкоцитов каждого типа может привести к заболеваниям и помочь в их диагностике.
Лейкограммы — это анализы крови, которые подсчитывают количество различных лейкоцитов, циркулирующих в кровотоке. Подсчитывая клетки и исследуя их форму, ветеринар получает ценную информацию, которая может помочь в диагностике широкого спектра заболеваний.
Повышение количества лейкоцитов может произойти в результате физической нагрузки или возбуждения. Эта реакция, известная как физиологический лейкоцитоз , вызывается повышенным содержанием адреналина (гормона адреналина). Волнение может удвоить общее количество лейкоцитов в течение нескольких минут. Кроме того, сокращение селезенки высвобождает в кровоток лейкоциты и эритроциты. Также может наблюдаться увеличение лимфоцитов ( лимфоцитоз ), особенно у молодых лошадей.
Нейтрофилия — это увеличение количества нейтрофилов в кровотоке, обычно вызванное воспалением. Структурные изменения нейтрофилов могут возникать при тяжелом воспалении и называются токсическими изменениями. Нейтрофилия может возникать у лошадей с вирусным артериитом лошадей и у лошадей, получающих лечение кортикостероидами.
Нейтропения — уменьшение числа нейтрофилов в кровотоке. Это может произойти из-за прилипания лейкоцитов к стенкам поврежденных сосудов, разрушения нейтрофилов, снижения их образования в костном мозге или если потребность в нейтрофилах превышает их продукцию в костном мозге. Нейтропения может возникать у всех видов при обширных бактериальных инфекциях. Разрушение нейтрофилов из-за иммунного ответа происходит у животных, и были разработаны тесты для обнаружения антинейтрофильных антител у лошадей. Повреждения развивающихся клеток крови в костном мозге также могут привести к нейтропении или даже панцитопении (снижению красных и белых кровяных телец и тромбоцитов). Это может произойти из-за реакции на лекарства, лучевой терапии, токсичных растений, рака костного мозга и вирусных инфекций (таких как грипп, вирус герпеса лошадей и вирусный артериит лошадей).
Эозинофилия — увеличение количества эозинофилов, участвующих в аллергических реакциях и борьбе с паразитами.
Повышение вызывается веществами, вызывающими аллергические реакции (например, гистамин), и некоторыми антителами. Эозинофилы увеличиваются при заражении паразитами, а иногда и при воспалении кишечника, легких или кожи. Снижение эозинофилов известно как эозинопения . Это может произойти из-за стресса или лечения кортикостероидами у лошадей.
Лимфоцитоз — увеличение числа лимфоцитов в кровотоке. Это может быть вызвано возбуждением (см. физиологический лейкоцитоз выше), вакцинацией и лейкемией, которая является раком иммунной системы. У жеребят обычно больше лимфоцитов, чем у взрослых. Иногда лимфоцитоз может возникать из-за стимуляции иммунной системы инфекциями, длительными заболеваниями или некоторыми гормонами.
Лимфопения — уменьшение числа лимфоцитов. Это чаще всего вызывается кортикостероидами (либо теми, которые высвобождаются в организме из-за стресса, либо назначаются для лечения болезни). Лимфопения также редко вызывается другими состояниями, такими как снижение образования лимфоцитов, некоторые вирусные инфекции (например, вирусный артериит лошадей) и наследственные заболевания (например, комбинированный иммунодефицит аравийских жеребят).
Моноцитоз представляет собой увеличение моноцитов и связано с воспалением, особенно длительным воспалением, а иногда и с применением кортикостероидов.
Лейкемия представляет собой злокачественный рак, характеризующийся увеличением количества аномальных лейкоцитов в кровотоке. Редко встречается у лошадей. Тяжесть лейкемии различна. Острый (кратковременный) лейкоз часто вызывает признаки заболевания во всем теле и имеет неблагоприятный прогноз. Эти животные имеют аномальные, незрелые лейкоциты в крови, а также сниженное количество других нормальных типов клеток крови (эритроцитов или тромбоцитов). Напротив, хронический (длительный) лейкоз часто вызывает мало признаков или вообще не вызывает их и может быть обнаружен случайно, имеет более длительное течение и лучше поддается лечению. У этих лошадей обычно нет дефицита других типов клеток крови. Ваш ветеринар может оценить перспективы вашей лошади на основе результатов лабораторных анализов и порекомендовать соответствующее лечение.